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《大理大學學報》2016年第8期

摘要：

目的：優選漾濞泡核桃花總黃酮的提取工藝，建立漾濞泡核桃花總黃酮含量測定的方法。方法：在單因素考察基礎上，用正交試驗法對漾濞泡核桃花總黃酮的提取工藝優選，并以蘆丁為對照品，采用差示分光光度法測漾濞泡核桃花總黃酮含量。結果：漾濞泡核桃花總黃酮最佳提取工藝為：提取溶劑50%乙醇，料液比1：20，沸水加熱回流3次，每次40min；漾濞泡核桃花總黃酮濃度在11~77μg/mL范圍內與吸光度成良好線性關系（r=0.9993），平均加樣回收率為99.7%，RSD為1.94%，總黃酮的含量為2.16%~2.82%。結論：此方法簡單、準確、穩定、可靠，可作為漾濞泡核桃花總黃酮的含量測定。

關鍵詞：

漾濞泡核桃花；差示分光光度法；總黃酮；含量測定

泡核桃又名漾濞核桃，系胡桃亞科Juglandaceae胡桃屬Juglans植物〔1〕，主要分布在云南、貴州、四川等地〔2〕。2013年3月，國家質檢總局批準對漾濞泡核桃實施地理標志產品保護。核桃植株全身都是寶，除了其果仁可食用外，核桃枝、核桃花、核桃殼、核桃葉等都可入藥〔3〕。核桃花即核桃花柱，又稱核桃紐，長壽菜，龍須菜，含有豐富的磷脂，有益于增強人體細胞活力，促進人體造血功能，能有效降低血脂，膽固醇，預防動脈硬化，此外核桃花酊劑可治疣子〔4〕。賈忠等〔5〕從核桃花中分離鑒定了7個黃酮類化合物。趙磊等〔6〕采用HPLC-DAD對核桃花中槲皮素與山奈酚進行了含量測定，李少泓等〔7〕采用紫外分光度法對蘭州的核桃花總黃酮進行了含量測定。因核桃花的提取物具有較深的顏色，對測定結果影響較大，故本實驗采用差示分光光度法消除背景吸收的干擾，測定漾濞泡核桃花總黃酮含量，以期為漾濞泡核桃花的進一步開發利用提供依據。

1實驗儀器與試劑

1.1儀器

TU-1901雙光束紫外可見分光光度計（北京普析通用儀器有限責任公司）；CP224C電子天平（奧豪斯儀器上海有限公司）；電子恒溫水浴鍋（上海科析試驗儀器廠）；超聲波清潔器（寧波新芝生物科技股份有限公司）。

1.2藥品與試劑

蘆丁（中國藥品生物制品檢定研究院，批號：080-9303）；乙醇、氫氧化鈉、亞硝酸鈉、硝酸鋁等試劑均為分析純；漾濞泡核桃花2013年4月采于漾濞縣平坡鎮（由大理大學藥學與化學學院楊月娥老師鑒定為JuglanssigillataDode.的花），樣品編號為1#~6#，將核桃花置陰涼通風的地方自然風干，粉碎備用。

2實驗方法和結果

2.1溶液制備

2.1.1蘆丁對照品溶液的制備

精密稱取在40℃下干燥至恒重的蘆丁對照品5.5mg置于25mL量瓶中加入適量50%乙醇溶解，定容，搖勻，得0.22mg/mL的蘆丁對照品溶液。

2.1.2樣品溶液的制備

精密稱取1#樣品0.5g，置100mL的燒瓶中，加入50%的乙醇溶液10mL，加熱回流3次，每次40min，過濾，合并濾液后定容至50mL，即得樣品溶液。

2.2測定波長的選擇

精密移取“2.1.1”對照品溶液1mL和“2.1.2”樣品溶液2mL，分別置于10mL量瓶中，加入5%亞硝酸鈉溶液0.2mL搖勻，放置6min，加入10%硝酸鋁溶液0.2mL搖勻，放置6min，再加入4%氫氧化鈉1mL，搖勻放置15min后定容，采用差示分光光度法在400~800nm進行光譜掃描，結果表明，蘆丁對照品和樣品在510nm處均有最大吸收，與文獻〔7-8〕報道一致，故選擇510nm作為測定波長。

2.3供試品溶液制備方法的考察

2.3.1提取方法的選擇

取1#樣品10份（編號1至10號），每份約0.5g，精密稱定，分別加入40%乙醇10mL，其中第1、2號浸泡12h后直接過濾，第3、4號浸泡12h后加熱回流40min后過濾，第5、6號直接加熱回流40min后過濾，第7、8號直接超聲40min后過濾，第9、10號浸泡12h后超聲40min后過濾，均定容至50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。結果表明加熱回流提取法的黃酮提取率均大于超聲提取法，浸泡12h后加熱回流與直接加熱回流2種提取方法吸光度接近，故本實驗采用直接加熱回流的方法。

2.3.2料液比的選擇

精密稱取1#樣品7份，每份約0.5g，以3：1、6：1、9：1、12：1、15：1、20：1、25：1的料液比加入40%的乙醇，在沸水浴中加熱回流40min后過濾，濾液定容為50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。見圖1。結果表明，料液比為20：1時總黃酮提取率最大，故本實驗采用的最佳料液比為20：1。

2.3.3提取時間的選擇

精密稱取1#樣品5份，每份約0.5g，加入40%的乙醇10mL，分別在沸水浴中加熱回流20、30、40、50、60min后過濾，濾液定容為50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。見圖2。結果表明，加熱回流40min時總黃酮提取率較大，故本實驗采用的最佳提取時間為40min。

2.3.4提取溫度的選擇

精密稱取1#樣品6份，每份約0.5g，加入40%的乙醇10mL，分別在40、50、60、70、80℃，沸水浴中加熱回流40min后過濾，濾液定容為50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。見圖3。結果表明，隨溫度的增加，總黃酮提取率變大，沸水時最大，故本實驗采用的最佳提取溫度為沸水。

2.3.5乙醇濃度的選擇

精密稱取1#樣品8份，每份約0.5g，加入20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%的乙醇10mL，分別在沸水浴中加熱回流40min后過濾，濾液定容為50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。見圖4。結果用40%乙醇總黃酮的提取率最高，因此選擇40%乙醇為提取溶劑。

2.3.6提取次數的考察

精密稱取1#樣品3份，每份約0.5g，加入40%的乙醇10mL，分別在沸水浴中加熱回流1、2、3次，每次加熱40min后過濾，濾液定容為50mL。分別取各試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以各樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。見圖5。結果表明，隨著提取次數的增加，總黃酮提取率變大，在提取3次的情況下總黃酮提取率最大，故本實驗采用的最佳提取次數為3次。單因素考察泡核桃花總黃酮的提取方法為加入40%的乙醇料液比為1：20，在沸水浴中加熱回流3次，每次40min。

2.4正交試驗考察

在單因素試驗的基礎上，對核桃花總黃酮的提取工藝條件進行優化，選用L9（34）正交試驗，選擇提取次數（A）、提取時間（B）、乙醇濃度（C）、料液比（D）4個因素，每個因素選擇3個水平。確立因素水平見表1，結果見表2。正交試驗結果表明，4種因素對提取結果影響大小依次為提取次數>提取時間>料液比>乙醇濃度。核桃花總黃酮提取最佳條件組合為A3B1C3D2，即最佳條件為50%乙醇濃度，料液比為1：20，提取3次，每次時間為40min，總黃酮提取率最高。

2.5驗證性實驗

精密稱取1#樣品3份，每份約0.5g，按正交試驗的最佳條件提取樣品溶液，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算黃酮提取率。結果總黃酮提取率為2.19%，RSD為1.67%。

3方法學考察

3.1線性關系考察

精密吸取蘆丁標準溶液0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5mL分別于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，在510nm波長處測定吸光度。以吸光度（Y）為縱坐標，濃度（C）為橫坐標，進行線性回歸分析，得到線性方程：Y=0.0118C+0.016，r=0.9993，結果表明蘆丁在11~77μg/mL范圍內線性關系良好。

3.2顯色穩定性試驗

取同一樣品溶液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，分別放置0、0.5、1、2、4、6h，在510nm波長處測定吸光度，RSD為1.56%。實驗結果表明，樣品6h內顯色穩定性良好。

3.3樣品穩定性試驗

取放置時間為0、0.5、1、2、4、6h的同一樣品試液2mL，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，RSD為2.19%。實驗結果表明，樣品在6h內穩定性良好。

3.4儀器精密度試驗

取同一樣品溶液2mL，平行6份，于10mL量瓶中，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，RSD為1.05%。實驗結果表明，儀器精密度良好。

3.5重復性試驗

精密稱取1#樣品6份，每份約0.5g，按“2.1.2”項下制備樣品溶液，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，代入回歸方程計算黃酮提取率。測得核桃花中總黃酮平均含量為2.24%，RSD為2.05%，實驗結果表明，該方法的重復性良好。

3.6加樣回收率試驗

取已知總黃酮含量（2.24%）的1#樣品約0.25g，平行6份，精密稱定，加入蘆丁標準溶液適量，按“2.1.2”項下制備樣品溶液，按“2.2”項下方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，計算加樣回收率。見表4。

3.7樣品含量測定

精密稱取1#~6#核桃花粉末各3份，每份約0.5g。按“2.1.2”項下制備樣品溶液，按“2.2”方法顯色，以樣品提取液作為空白對照，在510nm波長處測定吸光度，代入回歸方程計算黃酮提取率。見表5。

4討論

目前已有文獻報道核桃花內含有大量天然黑色素，且該色素易溶于水和乙醇〔9〕，李少泓等〔7〕采用紫外分光度法對核桃花中總黃酮進行含量測定，但并未考慮核桃花提取液中色素對實驗結果的影響。另有文獻報道采用比色法測總黃酮含量時會產生較大誤差〔10-11〕。預實驗中，掃描未顯色樣品提取液，在510nm處吸光度大于0.2，測樣品溶液時，以空白試劑為參比測得的吸光度比以未顯色樣品溶液為參比時的吸光度大。由吸光度過高或過低引起較大測量誤差時采用差示分光光度法能提高其精密度、準確度、靈敏度，故本實驗采用差示分光光度法。以NaNO2-Al（NO3）3-NaOH顯色，并以等量未顯色的提取液作為參比，在510nm處測定漾濞泡核桃花中的總黃酮含量，消除背景吸收的干擾。該方法操作簡單，有良好的穩定性、重復性和準確度。

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作者:蘇敏 楊盛春 周萍 單位:大理大學藥學與化學學院